• 说明书丨多糖多酚植物基因组DNA提取试剂盒.pdf

产品信息:

产品简介：

    多糖多酚植物DNA提取试剂盒采用特殊的吸附柱和新型的溶液体系，适用于从富含多糖多酚的植物组织样品中快速简单地提取基因组DNA。操作简便，可在1 h内完成植物样品（100 mg新鲜植物组织或30 mg干燥植物样本）的DNA提取和纯化工作。试剂盒内的纯化柱可选择性吸附核酸，不吸附蛋白质、多糖和其它非核酸类物质，得到的DNA纯度高，可直接用于PCR、酶切和杂交等实验。

储存事项：

1）本试剂盒在室温储存 12 个月不影响使用效果。

2）试剂盒储存于低温（4℃或者－20℃）会造成溶液沉淀，影响使用效果，因此运输和储存均在室温下（15℃－25℃）进行。

3）避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、PH 值变化，各溶液使用后应及时盖紧盖子。

产品特点：

1.不使用有毒的苯酚，氯仿等试剂.

2.简捷，单个样品操作一般可在60分钟内完成。

3.适应性比较广泛，可以提取包括拟南芥、小麦、松树、马铃薯、玉米、大豆、水稻、烟草、油菜、番茄等各类植物样本的DNA。

4.多次柱漂洗确保高纯度，OD₂₆₀/OD₂₈₀ 典型的比值高达 1.7～1.9，长度可达30kb-50kb，

可直接用于PCR，Southern-blot 和各种酶切反应。

产品组分：

使用前必读：

1、实验过程使用的离心机均可在室温进行（4℃也可以），转速可以达到12,000rpm的传统台式离心机。

2、样本应该避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。

3、Buffer LP1 Plus可能发黄，并不影响使用。

4、若Buffer LP1 plus和LP2有沉淀析出，可在37℃水浴溶解，摇匀后使用。

使用方法：

提示：

→第一次使用前请先在在 Buffer LP3，Buffer PW中添加指定量的无水乙醇，并做好标记！

→在使用前加入20μL β-巯基乙醇到1mL Buffer LP1 Plus中，含有β-巯基乙醇的裂解液可在室温下保存长达1个月

1、处理材料:取植物新鲜组织  200  mg 或干重组织  40  mg ，加入液氮充分碾磨 。加入 500  μL Buffer LP1 Plus 裂解30min（中间每5min振荡混匀1min）【如果难裂解样本，可以适当增加裂解时间】。

2、放入离心机，12000rpm离心5min，将上清液全部移至新的离心管中加入6 μL RNase A（10 mg/mL ），旋涡振荡1 min ，室温放置 10 min。

3、加入163μL Buffer LP2，充分混匀，旋涡振荡1 min。 12,000 rpm 离心5 min，将上清移至新的离心管中。

4 、加入上清液1.5倍体积的Buffer LP3（例如500μL的上清液加750μL 的Buffer LP3）（使用前请先检查是否已加入无水乙醇！），立即充分振荡混匀30秒，此时可能会出现絮状沉淀。

5、将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱中 （吸附柱放入收集管中），12, 000 rpm离心30秒，倒掉废液，吸附柱放回收集管中。

6 、 向吸附柱中加入600μL 漂洗液Buffer PW（使用前请先检查是否已加入无水乙醇！），12,000rpm 离心30秒，倒掉废液 ，将吸附柱放入收集管中。

7、重复步骤 6。

8、将吸附柱放回收集管中，12,000 rpm离心2分钟，倒掉溶液，将吸附柱置于室温5分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液Buffer PW。

9 、将吸附柱装入一个干净的离心管中，向吸附柱的中间部位悬空滴加50-200μL的洗脱缓冲液Buffer TE，室温放置2-5min，12,000rpm离心2分钟，将溶液收集到离心管中，获得DNA。

注意 ：为了增加DNA得率，可以将步骤10离心得到的溶液再次加入吸附柱中，室温放置2 min，12,000rpm离心2分钟。洗脱液不应该少于50μL，体积过小影响回收效率。

DNA浓度及纯度检测

得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。

DNA应在OD₂₆₀处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。

OD₂₆₀/OD₂₈₀比值应为1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH₂O，比

值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品仅用于科研等非医疗用途！