价格:1,788
货号Anti-HA Magnetic Beads磁珠

产品详情
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产品信息:
产品名称 | 产品编号 | 规格 |
Anti-HA Magnetic Beads磁珠 | HRD2261 | 1mL |
HRD2262 | 5mL |
产品描述:
Anti-HA 磁珠是粒径为 200nm 的纳米 磁珠表面上共价结合了大量的高质量的鼠源抗 HA 单克隆抗体,纳米级磁珠提供的超大比表面积,具有更多的结合 位点,磁珠使用量更少,非特异性吸附率低。本产品广泛 应用于细胞裂解物、细胞分泌上清、血清、腹水等样品中 带有 HA 标签融合蛋白的免疫沉淀(IP)或免疫共沉淀 (Co-IP)。由于采用磁性分离,使得每次 IP 和 Co-IP 可 以节省 40%的时间。
产品特性:
基质 |
硅基磁珠 |
配体 |
鼠源抗 HA 单克隆抗体 |
粒径 |
200nm |
磁珠浓度 |
10mg/mL |
结合能力 |
≥0.4mg HA 标签融合蛋白/mL 磁珠 |
适用范围 |
IP,Co-IP 等 |
保质期 |
在 2∽8℃稳定保存两年 |
操作流程:
注意:缓冲液自行准备或直接购买我司 IP 试剂盒。 贴壁细胞样品:
1.移去培养基,用 PBS 洗细胞两次。
- 收集细胞至 1.5mL EP 管内,按比例加入 IP Lysis/Wash Buffer,同时加入 PMSF 等相应的抑制剂,混匀后置于冰 上静置 5∽20min(期间混匀几次)。
- 4℃, 12000∽16000xg,10min 离心收集上清液,置于冰 上以备后续实验(或置于-80℃长期保存)。
培养皿 IP Lysis/Wash Buffer 推荐使用体积:
培养皿大小/表面积 |
IP Lysis/Wash Buffer 体积 |
100 mm x 100 mm |
500∽1000µL |
100 mm x 60 mm |
100∽300µL |
6 孔板 |
100∽200µL |
悬浮细胞样品:
- 4℃、500∽1000xg、10min,收集细胞,弃上清。
- 用 PBS 洗细胞一次,即用 PBS 将细胞团重悬,4℃、500∽1000xg、5min,收集细胞,弃上清。
- 用预冷的 IP Lysis/Wash Buffer 重悬细胞。每 50mg细胞使用 500μL IP Lysis/Wash Buffer。同时加入 PMSF等相应的抑制剂,混匀后置于冰上静置 5∽20min(期间混匀几次)。
- 4℃,12000∽16000xg,10min 离心收集上清液,置于冰上以备后续实验(或置于-80℃长期保存)。
血清样品:
一般建议建议用 IP Lysis/Wash Buffer 稀释血清样品 至目标蛋白终浓度为 50~150µg/mL,置于冰上备用(或 置于-20℃长期保存)。
免疫沉淀:
注意:为保证磁珠均匀分布,使用前通过反复颠倒或轻微涡旋混匀瓶中磁珠。
- 将20∽50µL的Anti-HA磁珠加入1.5mL离心管中。
- 向磁珠中加入 500µL 预冷 PBS,轻柔混匀。
- 将离心管放入磁力架中收集磁珠到离心管的一边。去除上清。
- 向离心管中加入 200∽500µL IP Lysis/Wash Buffer。颠倒离心管数次或轻微涡旋混匀 1min。用磁力架收集磁珠。去除上清。
- 将含有HA标签标记的蛋白样品加入装有磁珠的离心管中,保持混匀室温下孵育 1∽2h,或 4℃ 2∽4h。
- 用磁力架收集磁珠,除去未结合的样品,保存以备分析。
- 向离心管中加入 1000µL IP Lysis/Wash Buffer,轻柔混匀磁珠 5∽10min。收集磁珠,弃上清。再重复洗两次。
- 变性洗脱:向离心管中加入 80∽100µL SDS-PAGE Sample Loading Buffer(1×),将样品置于 100℃水浴或者金属浴中加热 10min。通过磁力架分离磁珠,保留含有目的抗原的上清。
备注:如需保持蛋白活性,也可采用以下洗脱方式。
低 pH 洗脱:向离心管中加入 100µL Elution Buffer。保持混匀在室温下孵育离心管 5∽10min。通过磁力分离磁珠,保留含有目的抗原的上清。每 100µL 洗出液中加入20µL Neutralization Buffer 来中和低 pH。
注意事项:
- 进行实验操作之前,请务必认真阅读本操作说明书。
- 请勿高速离心、干燥或冷冻磁珠,这些操作会导致磁珠聚集而降低结合能力。
- IP 实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到 IP Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。
- 磁珠使用前应充分振荡均匀。磁珠应保存在储存溶液中,防止干燥。
- 本产品仅供科学研究使用。
问题解决:
1.抗原没有免疫沉淀下来
① 样品中所含的抗原过少,不足以被检测
建议:通过 SDS-PAGE 或蛋白免疫印迹验证裂解液 中蛋白的表达和/或裂解效率; 如果需要,加大样品量 。
② IP Lysis/Wash Buffer 中的成分干扰了抗原与抗体的结合
建议:使用其它缓冲液进行免疫沉淀和漂洗(例如, 含有 0.5% CHAPS 的 TBS)
2.获得的蛋白量低
① 蛋白质被降解
建议:加入蛋白酶抑制剂
② 所使用的磁珠量不够
建议:提高捕获免疫复合物所使用的磁珠量
③ 样品中的目标蛋白量不够
建议:提高抗原样品量
3.多条非特异条带 有非特异性的蛋白结合在磁珠上
建议:在 IP Lysis/Wash Buffer 中加入 50∽350mM NaCl。加大洗脱力度和次数。
4.磁珠聚集
磁珠在低 pH 的 Elution Buffer 中发生聚集属于正常 现象,不影响磁珠的正常使用。
建议:用 IP Lysis/Wash Buffer 至中性,然后用含有 0.1%(v/v)Tween-20 的 Tris buffer(pH7.5)振 荡重悬磁珠,并用超声波水浴处理,即可使磁珠恢复 均匀状态,以上处理均不影响磁珠的抗体结合效率。 也可添加终浓度为 0.1%(v/v)的非离子型去垢剂(如 Tween-20 或 Triton X-100)可有效防止磁珠聚集。
注意:超声处理也会使磁珠在样品溶液中捕获的抗体 脱落,所以磁珠在加样后洗脱前不宜使用该方法。